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Y2HGold-GAL4 系统酵母双杂互作 验证试剂盒 

Y2HGold-GAL4 系统酵母双杂互作

验证试剂盒
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    Y2HGold-GAL4 系统酵母双杂互作

    验证试剂 

    cat:huayueyang09921

    产品组成:

    产品

    品名称

     

    成份一

    常温储存

     

    养基

    SD/-Leu/-Trp Broth

    0.5 L×1

    SD/-Leu/-Trp with Agar

    0.5 L×3

    SD/-His/-Leu/-Trp with Agar  (备用)

    0.5 L×1

    SD/-Ade/-His/-Leu/-Trp with Agar

    0.5 L×3

     

    成份二

    -20℃储存

    选剂

    X-α-gal  (20mg/mL ,过滤除菌)

    5×1 mL

    金担子素 A  (AbA 1mg/mL)

    1 mL

    质粒

    pGADT7 质粒

    10 μg

    pGBKT7 质粒

    10 μg

    成份三

    -80℃储存

    照菌株

    Y2HGold[pGBKT7-53+pGADT7-T]菌株

    0.2 mL

    Y2HGold[pGBKT7-Lam+pGADT7-T]菌株

    0.2 mL

    感受态细

    Y2HGold 感受态细胞

    20×100 μL/

     

    注:

    1.本试剂盒可用于 10 对互作蛋白验证 (质粒除外)。

    2.注意每个成份的保存温度,感受态细胞务必-80 ℃保存。

    3. 0.5 L×3 代表:3 个包装,每个包装 0.5L;5×1 mL 代表:1 个包装,含 5 个 1 mL。

    4.  按照本试剂盒的流程操作,在最大程度上节约时间,最快 10 d 可出实验结果。

    5.  本方案不适用大批量酵母双杂交实验,因为诱饵蛋白表达、 自激活检测和毒性验证应该预先完成。

    产品说明:

    酵母双杂的原理基础:很多真核生物的位点特异转录激活因子通常具有两个可分割开的结构域,即  DNA 特异结合域 (DNA-binding domain, BD) 与转录激活域 (Transcriptional activationdomain, AD) 。这两 个结构域各具功能,互不影响。但一个完整的激活特定基因表达的激活因子必须同时含有这两个结构域, 否则无法完成激活功能。不同来源激活因子的 BD 区与 AD 结合后则特异地激活被 BD 结合的基因表达。 基于这个原理,可将两个待测蛋白分别与这两个结构域建成融合蛋白,并共表达于同一个酵母细胞内。如 果两个待测蛋白间能发生相互作用,就会通过待测蛋白的桥梁作用使 AD 与 BD 形成一个完整的转录激活 因子并激活相应的报告基因表达。通过对报告基因表型的测定可以很容易地知道待测蛋白系统。分子间是否发生了相互作用。

    酵母双杂交系统由三个部分组成 ∶(1)与 BD 融合的蛋白表达载体,被表达的蛋白称诱饵蛋白(bait)。(2) 与 AD 融合的蛋白表达载体,被其表达的蛋白称

     

    靶蛋白(prey) 。(3)带有一个或多个报告基因的宿主菌株。 常用的报告基因有 HIS3,URA3,LacZ 和 ADE2 等。而菌株则具有相应的缺陷型。双杂交质粒上分别带有 不同的抗性基因和营养标记基因。这些有利于实验后期杂交质粒的鉴定与分离。根据目前通用的系统中BD 来源的不同主要分为 GAL4 系统和 LexA 系统,目前常用的是 Y2HGold-GAL4 和 AH109-GAL4 系统。

    Y2HGold 菌株是 GAL4 系统酵母双杂实验用菌株,MATa 型,可直接转化质粒或与 MATα型酵母菌株 Y187 通过 mating 操作进行蛋白互作验证或筛库试验。Transformation marker 为:trp1 ,leu2 ,报告基因为: AbAr,HIS3,ADE2,MEL1。Y2HGold-GAL4  酵母双杂系统需要两种质粒配套使用:pGBKT7 和 pGADT7。 质粒 pGBKT7 的筛选标志为 TRP1 ,用于表达 DNA-BD(来自酵母转录因子 GAL4N 端 1~ 174 位氨基酸)与 目标蛋白(Bait)的融合蛋白;质粒 pGADT7 的筛选标志为 LEU ,用于表达 AD(GAL4 C 端 768~881 位氨基酸)与目标蛋白(Prey)的融合蛋白。

    一、实验耗材和试剂

    本试剂盒提供的产品以产品组成为准,部分试剂和耗材需要自备,也可以在本公司单独购买。

    1.  灭菌的枪头 (1000 μL 、200 μL 、10 μL)、涂布棒或玻璃珠,Φ90 mm 培养皿,备用。

    2. Carrier DNA 在 95- 100 ℃水浴 5 min ,后快速冰浴,可再重复一次,备用。

     

    3.  稀释金担子素:取 100 μL AbA(1mg/mL)于 900 μL 无水乙醇中稀释,充分混匀,即AbA 浓度为 100 μg/mL, 4 ℃冰箱中备用 (稀释 10 倍后使用有利于在培养基中混匀,建议按用量稀释);

    4.  普通平板制备:

    1 条培养基倒入 0.5 L 去离子水中,无需调节 pH 值,高压灭菌(如,115 ℃灭菌 20 min )。液体培养基 4℃ 保存备用;固体培养基,按照 20-25 mL/块倒平板 (Φ90 mm),凝固后放入 4 ℃冰箱保存;

    5.  特殊平板制备:

    SD/-Ade/-His/-Leu/-Trp with Agar  (X-α-gal) :将一条 SD/-Ade/-His/-Leu/-Trp with Agar 培养基溶于 500 mL 去离子水,无需调节

     

    pH 值,高压灭菌 (如,115 ℃灭菌 20 min ) ,冷却至 50 ℃左右,每 25 mL 固体培养 基加入 25-50 μL X-α-gal 母液,倒平板 (25 mL/块,Φ90 mm) ,凝固后于 4 ℃冰箱保存。

    SD/-Ade/-His/-Leu/-Trp with Agar(AbA +X-α-gal):将一条 SD/-Ade/-His/-Leu/-Trp with Agar 培养基溶于 500 mL 去离子水,无需调节 pH 值,高压灭菌 (如,115 ℃灭菌 20 min ) ,冷却至 50 ℃左右,每 20 mL 固体 培养基加入 20-40 μL X-α-gal 溶液 (20 mg/mL) ,稀释后的金担子素 (AbA) 参考表 1 加入,倒平板 20 mL/块 (Φ90 mm) ,凝固后于 4 ℃冰箱保存。

     

    二、菌株使用及保存

    1.  挑取一环甘油保存的菌液 (约 10-50μL) 于 SD/-Leu/-Trp 平板上划线,28-30 ℃培养 3-5 d ,培养出来的 单菌落可直接用于互作验证实验。

    2.  挑取单菌落于 SD/-Leu/-Trp 液体培养基中,200 r/min 、28-30 ℃振荡培养 2 d ,OD600 应大于 1 ,取1ml菌液集菌,弃上清,加入 0.2 mL 15%甘油,-80 ℃可长期保存。

    三、实验方法

    双杂实验方案较多,本公司根据多年经验,给出一个较优的点板互作验证实验方案,我们将蛋白表达, 自激活检测,毒性验证放在互作检测之后 (本方案不作分析) 。我们假设载体构建已完成,互作验证分为 三个步骤:共转化,阳性克隆鉴定 (选做),互作检测。本方案还对常见互作验证结果进行了分析。

    3.1 共转化

    1.  取 100 µL 冰上融化的 Y2HGold 感受态细胞,依次加入预冷的质粒 pGBKT7(2-5 µg,约 5 μL),pGADT7 (2-5 µg ,约 5 μL),Carrier DNA  (95- 100 ℃ ,5 min ,快速冰浴,重复一次) 10 µL ,PEG/LiAc 500 µL 并 吸打几次混匀,30 ℃水浴 30 min ( 15 min 时翻转 6-8 次混匀)。

    2.  将管放 42 ℃水浴 15 min (7.5 min 时翻转 6-8 次混匀)。

    3. 5000 rpm 离心 40 s 弃上清,ddH2O 400 µL 重悬,离心 30 s 弃上清。

    4. ddH2O 50 µL 重悬,涂布于 SD/-Leu/-Trp 平板,28-30 ℃培养 48-96 h。

    注:按表 1 ,将各质粒转入酵母 Y2HGold 感受态细胞中,阳性和阴性对照菌株于 SD/-Leu/-Trp 平板划线活 化。

     

    3.2  阳性克隆鉴定 (选做)

    此步骤可以省略。详细步骤可参考 SK2420 酵母阳性克隆快速检测试剂盒,本试剂盒包含猎物 AD 引物,诱饵 BD 引物可根据实际情况设计。

    3.3 互作检测

    1.  每个样品挑取新鲜单克隆(2-3 mm )于 1 mL ddH2O 无菌水中重悬,OD600 调至 0.2(也可以用 SD/-Leu/-Trp 液体培养基培养至 OD600=0.2)。

    2.  用 ddH2O 依次稀释 10 倍,100 倍,1000 倍 (即 OD600=0.2 、0.02 、0.002 、0.0002)。

    3.  按照先实验组后对照组的顺序,分别点 10 μL 菌悬液于 SD/-Leu/-Trp 、SD/-Leu/-Trp/-His/-Ade/X-α-gal 平板 (如已知自激活浓度,需加入 AbA) ,28-30 ℃培养 3-5 d。

     

     

     

    互作验证分析

    4.1 互作/无互作

    由图 2 可知,对照组 Y2HGold[pGBKT7-53+pGADT7-T] Y2HGold[pGBKT7-Lam+pGADT7-T] SD-Leu/Trp 板上长势相同;Y2HGold[pGBKT7-53+pGADT7-T] SD/-Leu/-Trp/-His/-Ade/X-α-gal 板上显蓝 色,且长势同 SD/-Leu/-Trp 板;而 Y2HGold[pGBKT7-Lam+pGADT7-T] SD/-Leu/-Trp/-His/-Ade/X-α-gal板上不生长且不显色,所以,pGBKT7-53 pGADT7-T 有互作,pGBKT7-Lam pGADT7-T 无互作。

     

    同理,pGBKT7-Bait1 pGADT7-Prey1 有互作,pGBKT7-Bait1 pGADT7 无互作(即 pGBKT7-Bait1无自激活)。

    4.2 Bait 蛋白有自激活

    Y2HGold[pGBKT7-Bait2+pGADT7-Prey2] Y2HGold[pGBKT7-Bait2+pGA

    DT7],在 SD/-Leu/-Trp/-His/-Ade/X-α-gal 板上显蓝色,且长势同 SD/-

    Leu/-Trp 平板,所以 pGBKT7-Bait2 具有自激活。

    解决自激活:在 SD-Leu/Trp/His/Ade/X-α-gal 板中加入梯度浓度的(AbA),

    重做互作验证实验即可。

    4.3 Prey 蛋白有毒性

    SD/-Leu/-Trp Y2HGold[pGBKT7-Bait3+pGADT7-Prey3] 长势 明显弱于Y2HGold[pGBKT7-Bait3+pGADT7] SD/-Leu/-Trp/-His/-Ade/X-α-gal板上Y2HGold[pGBKT7-Bait3+pGADT7-Prey3]能够显蓝色(虽然长势弱),Y2HGold[pGBKT7-Bait3+pGADT7]不能生长或生长较弱,同样能够证明 pGBKT7-Bait3 pGADT7-Prey3 有互作,pGBKT7-Bait3 pGADT7 无互作(即 pGBKT7-Bait3 无自激活)。

     

    五、注意事项

    1. 本产品仅供科研使用。请勿用于医药、临床诊断或治疗,食品及化妆品等用途。

    2. 为了您的安全和健康,请穿好实验服并佩戴一次性手套和口罩操作。

    3. 请注意无菌操作,避免微生物污染。

     

     

     

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