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还原型谷胱甘肽(GSH)含量检测试剂盒

还原型谷胱甘肽(GSH)含量检测试剂盒
售价:
¥ 350.00
原价: ¥390.00
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HYYSB093-50T
数量:
  • 还原型谷胱甘肽(GSH)含量检测试剂盒

    CAT:HYYSB093-50T

    可见分光光度法

    注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

    规格:50T/48S

    产品组成:

    试剂名称

    规格

    保存条件

    试剂一

    液体 60mL×1

    4℃保存

    试剂

    液体 50mL×1 瓶(自备

    4℃保存

    试剂

    液体 15 mL×1

    4℃保存

    标准品

    粉剂×1

    4℃保存

    溶液的配制:

    标准品: 10mg 还原型谷胱甘肽 (GSH)。临用前加入 1mL 蒸水溶解,浓度为 10m/mL。2-8可以保存6周。

     

    产品说明:

    谷胱甘肽是由谷氨酸(Glu)半胱氨酸(Cys) 和氨酸(Gy) 组成的天然三肽,是一种含巯基(-SH)的化合物,广泛存在于动物组织、植物组织、微生物和酵母中。谷胱甘肽能和 5,5’-二硫代-双(2-硝基苯甲酸)5,5’-dithiobis-2-nitrobenoic acid,DTNB)反应产生 2--5-巯基苯甲酸和谷胱甘肽二硫化物 (GSSG)。2-硝基-5-疏基苯甲酸为黄色产物,在波长 412nm 处具有最大光吸收。

    DTNB

    GSH         TNB + GSSG

     

    技术指标:

    最低检出限:2.67 ug/mL

    线性范围:3.125-250 ug/mL

    需自备的仪器及用品:

    分析天平、匀浆器/研钵/细胞超声破碎仪、低温离心机、水浴锅、移液器、可见分光光度计、1mL 玻璃比色皿。

    操作步骤:

    一、样本处理

    1.组织处理:

    新鲜组织首先用 PBS 冲洗2 次,然后称取动物组织或者植物组织 0.1g。加入试剂一润洗过的匀浆器中(匀浆器提前放冰上预冷):然后加入 1mL 试剂一 (组织/试剂一比例保持不变即可),迅速冰上充分研磨(使用液氮研磨效果更好): 8000g,4C离心 10min; 取上清液放置于 4℃待测,若暂时不能完成测试可放于-80℃保存(可保存3 天)

    2.血液处理

    血浆:将收集的抗凝血于 4℃,600g 离心10分钟,吸取上层血浆到另一支试管中,加入等体积的试剂一,4℃,8000g 离心10分钟,将上清移入新的试管中放置于 4待测,若暂时不能完成测试可放于-80保存(可保存 3 天)

    血细胞: 将收集的抗凝血于4℃600g 离心10分钟,弃去上层血浆用3倍体积的 PBS 清洗3次(用PBS重悬血细胞,600g 离心10分钟),加入等体积试剂一,混匀后 4放置10分钟,8000g 离心10分钟,吸取上清放于 4待测,若暂时不能完成测试可放于-80保存(可保存 3 天)。

    3、细胞处理

    收集不少于 500 万个细胞,首先用 PBS 清洗细胞 2次 (PBS 重细胞,600g离心10分钟),加入1mL 试剂一重悬细胞,反复冻融 2-3 次(可在液氮中冻结,37水浴中溶解) 或者进行超声(200W,超 3s,停 10s,重复30 次),8000g 离心 10 分钟,收集上清于4℃待测,若暂时不能完成测试可放于-80保存 (可保存 10 天)。

    二、 测定步骤

    1、分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 412nm,用蒸馏水调零。

    2、标准品的准备:吸取10mg/mL标准溶液,用蒸留水稀释至200ug/mL、100ug/mL、50ug/mL、25ug/mL、12.5ug/mL。

    3标准品稀释表:

    稀释前浓度ug/mL)

         标准液体积 uL)

      蒸馏水体积(uL)

      稀释后浓度(ug/mL)

    10000(即10mg/mL)

    20

    980

    200

    200

    500

    500

    100

    100

    500

    500

    50

    50

    500

    500

    25

    25

    500

    500

            12.5

    备注:实验中每个标准管需 100µL 标准液。

     

    4、加样表:在 1.5mL EP 管中分别加入下列试剂

     

    试剂名称(uL)

    测定管

    标准管

    空白管

    样本

    100

    -

    -

    标准溶液

    -

    100

    -

    蒸馏水

    -

    -

    100

    试剂二

    700

    700

    700

    试剂三

    200

    200

    200

    混匀后常温静置 2min 后分别测定测定管、标准管和空白管在 412nm 处的吸光度,分别记为A测定、A标准 和 A空白,计算 ΔA=A测定-A空白,ΔA标准=A 标准-A 空白。标准曲线和空白管只需做 1-2 次。

    三、GSH 含量计算

    1.标准曲线的绘制 

    据标准管的浓度(x,μg/mL)和吸光度 ΔA标准(y,ΔA标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将ΔA(y,ΔA)带入公式计算样本浓度(x,μg/mL)。

    2.GSH 含量计算:

    1)按蛋白浓度计算

    GSH 含量(μg/mg prot)=x×V 样÷(V 样×Cpr)=x÷Cpr

     

    1. 按样本质量计算

    GSH 含量(μg/g 质量)=x×V 样÷(V 样÷V 样总×W)=x÷W

     

    1. 按细胞数量计算

     GSH 含量(μg/106cell)=x×V 样÷(V 样÷V 样总×N)=x÷N

     

    1. 按血浆(血细胞)体积计算

     GSH 含量(μg/mL)=2x

     

    V 样总:上清液总体积,1mL;V 样:加入反应体系中上清液体积,100μL=0.1mL;W:样本质量,g;Cpr: 上清液蛋白质浓度,mg/mL;N:细胞数量,以106为单位计量;2:稀释倍数,血浆(血细胞)体积被稀释一倍。

     

    注意事项:

    1. 样本处理需匀浆完全,若当天不能完成测量,可放-80℃保存 3 天。
    2. 若不确定样本中 GSH 含量的高低,可稀释几个梯度后再进行测量。
    3. 因为试剂一中含有蛋白质沉淀剂,因此上清液不能用于蛋白浓度测定。如需测定蛋白含量,需另取组织。

    4、 如果测定吸光值超过线性范围吸光值,可以增加样本量或者稀释样本后再进行测定。

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