细胞增殖-毒性检测试剂盒 (CCK-8)
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细胞增殖-毒性检测试剂盒 (CCK-8)
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保存条件:CCK-8 溶液在避光,0-5℃的条件下可以保存一年; -20℃下保存 2 年;如需经常使用请将试剂存放在 0-5℃,为防止背景值增加干扰实验结果, 请勿反复冻融。
产品内容:
产品名称
500T
10000T
CCK-8 (Cell Counting Kit-8)
5×1mL
100m L
说明书
1 份
产品说明:CCK8 试剂盒提供了一种灵敏度高,操作简便,使用安全,重现性好 的细胞增殖与活性检测方法。与传统的 MTT 相比无需有机溶剂和放射性同位素, 步骤少,无损失,结果准确!本试剂盒检测非常便捷。试剂盒仅一管已经配制好的 含有 WST-8 的 CCK-8 溶液,无须再进行任何配制等操作 。无须使用同位素,所有 的检测步骤仅在同一块 96 孔板内完成。不必洗涤细胞,不必收集细胞,也不必采 用额外的步骤去溶解 formazan 。可以用于大批量样品的检测。
1. 本试剂无毒,使用中无需有机溶剂,操作更加安全。
2. 酚红和血清对 CCK 法的检测不会造成干扰 (扣除空白孔即可)。
一:通用操作步骤
6. 在 96 孔板每孔加入 100u L 细胞悬液;
7. 在培养箱中预培养细胞;
8. 向培养板中加入药物(如果不加药物,直接进行第五步操作);
9. 在培养箱中培养一段时间;
10. 向每孔加入 10 µ L 的 CCK-8 溶液;
11. 将培养板在培养箱内孵育 1~4 小时(根据具体实验优化);
12. 用酶标仪测定在 450nm 处的吸光度。
二:制作标准曲线 (测定细胞具体数量时)
7. 先用细胞计数板计数所制备的细胞悬液中的细胞数量,然后接种细胞;
8. 按比例(例如:1/2 比例)依次用培养基等比稀释成一个细胞浓度梯度,一般要 做 3-5 个细胞浓度梯度,每组 3-6 个复孔;
9. 接种后培养 2-4 小时使细胞贴壁,然后加 CCK-8 试剂培养一定时间后测定 OD 值,制作出一条以细胞数量为横坐标(X 轴),OD 值为纵坐标 (Y 轴)的标准曲线。 根据此标准曲线可以测定出未知样品的细胞数量(用此标准曲线的前提是实验的条件要一致,便于确定细胞的接种数量以及加入 CCK 后的培养时间)。
三:细胞活性检测
1. 在 96 孔板中接种细胞悬液 (100µ L/孔) 。将培养板放在培养箱中预培养 (在 37℃,5% CO2 的条件下);
2. 向每孔加入 10 µ L 的 CCK -8 溶液 (注意不要在孔中生成气泡,它们会影 响 OD 值的读数);
3. 将培养板在培养箱内孵育 1-4 小时;
4. 用酶标仪测定在 450nm 处的吸光度;
5. 如果暂时不测定 OD 值,打算以后测定的话,可以向每孔中加入 10 µ L
0.1M 的 HCL 溶液或者 1% w/v SDS 溶液,并遮盖培养板避光保存在室温条件 下。在 24 小时内吸光度不会发生变化。
四:细胞增值-毒性检测
使用方法 (以 96 孔板为例,其他规格培养板按实际情况安排):
1. 在 96 孔板中配置 100µl 的细胞悬液(通常细胞增殖实验每孔加入 100µl 2000 个细胞,细胞毒性实验每孔加入 100µl 5000 个细胞。具体每孔所用的细胞 的数目,需根据细胞的大小,细胞增殖速度的快慢等因素决定) 。按照实验需要, 进行培养 (在 37 °C ,5%CO2, ,的条件下) 预培养 24 小时;
2. 向培养板加入 1-10µl 不同浓度的待测药物刺激;
3. 将培养板在培养箱孵育一段适当的时间 (后面有具体细胞的建议时间,例
如:6 、12 、24 或 48 小时);
4. 每孔加入 10µlCCK-8 溶液(注意不要在孔中生成气泡,它们会影响 OD 值 的读数) 。如果起始的培养体积为 200µl ,则需加入 20µl CCK-8 溶液,其他情况 以此类推。可以用加了相应量细胞培养液和 CCK-8 溶液但没有加入细胞的孔作
空白对照。如果担心所使用的药物会干扰检测,需设置加了相应量细胞培养液、药 物和 CCK-8 溶液但没有加入细胞的孔作为空白对照;
5. 在细胞培养箱内继续孵育 1-4 小时,对于大多数情况孵育 1 小时就可以 了。时间的长短根据细胞的类型和细胞的密度等实验情况而定,初次实验时可以在 0.5 、1、2 和 4 小时候分别用酶标仪检测,然后选取吸光度范围比较适宜的一个时
间点用于后续实验;
6. 用酶标仪测定在 450nm 处的吸光度 ,如无 450nm 滤光片 ,可以使用 420-480nm 的滤光片。可以使用大于 600nm 的波长,例如 650nm ,作为参考波 长进行双波长测定;
7. 如果暂时不测定 OD 值,打算以后测定的话,可以向每孔中加入 10µl 0.1M 的 HCL 溶液或者 1% w/v SDS 溶液,并遮盖培养板避光保存在室温条件下。在 24 小时内吸光度不会发生变化;
8. 注意:如果待测物质有氧化性或还原性的话,可在加 CCK 之前更换新鲜培 养基 (除去培养基,并用培养基洗涤细胞两次,然后加入新的培养基) ,去掉药物
影响。当然药物影响比较小的情况下,可以不更换培养基,直接扣除培养基 中加入药物后的空白吸收即可。
五:活 计算
细胞活力* (%) = [A(加药)-A (空白) ]/[A (0 加药) -A (空白) ] ×100 A (加药):具有细胞、CCK 溶液和药物溶液的孔的吸光度
A (空白):具有培养基和 CCK 溶液而没有细胞的孔的吸光度
A (0 加药):具有细胞、CCK 溶液而没有药物溶液的孔的吸光度
*细胞活力:细胞增殖活力或细胞毒性活力
六:细胞增殖分析
1. 制备细胞悬液;
2. 接种到 96 孔培养板 ;
3. 37℃培养箱中培养 :细胞接种后贴壁大约需要培养 24 小时,不需要贴壁的
话,可以省去这个步骤;
4. 加入 10ul 的 CCK-8 : 由于每孔加入的 CCK-8 量比较少,有可能会因试剂沾 在孔壁上而带来误差,建议在加完试剂后轻轻敲击培养板以帮助混匀;
5. 培养 1-4 小时:细胞的种类不一样,形成的 Formazan 的量也不一样,如 果显色不够的话,可以继续培养,以确认最佳条件,特别是血液细胞形成的 Formazan 很少,需要较长的显色时间 (5-6 小时), 如果颜色不均匀的话,可以轻轻敲击培 养板以帮助混匀;
6. 测定 450nm 吸光度:建议采用双波长进行测定,检测波长 450-490nm,参 比波长 600-650nm。
七:细胞毒性分析
1. 制备细胞悬液;
2. 接种到 96 孔培养板;
3. 37℃培养箱中培养:细胞接种后贴壁大约需要培养 24 小时,不需要贴壁的
话,可以省去这个步骤;
4. 加入不同浓度的毒性物质;
5. 加入 10u L 的 CCK-8 :加入毒性物质的培养时间,要看毒性物质的性质和细 胞的敏感性,一般要根据细胞周期来决定,起码要一代以上的周期;
6. 培养 1-4 小时: 由于每孔加入的 CCK-8 量比较少,有可能会因试剂沾在孔
壁上而带来误差,建议在加完试剂后轻轻敲击培养板以帮助混匀;
7. 测定 450nm 吸光度:如果颜色不均匀的话,可以轻轻敲击培养板以混匀, 建议采用双波长进行测定,检测波长 450-490nm, 参比波长 600-650nm;
8. IC50 的计算方法:
按照以下公式计算细胞存活率,绘制成图表,细胞存活率 50%的值即为 IC50 . 细胞存活率 (%) = [(As-Ab)/(Ac-A b)]×100%
As:实验孔 (含有细胞的培养基、CCK-8 、毒性物质)
Ac :对照孔 (含有细胞的培养基、CCK-8 、没有毒性物质) Ab :空白孔 (不含细胞和毒性物质的培养基、CCK-8)
八:注意事项
5. 由于使用 96 孔板进行检测,如果细胞培养时间较长,一定要注意蒸发的问 题。一方面, 由于 96 孔板周围一圈最容易蒸发,可以采取弃用周围一圈的办法, 改加 PBS,水或培养液;另一方面,可以把 96 孔板置于靠近培养箱内水源的地方, 以缓解蒸发;
6. CCK-8 检测细胞活性的原理是通过检测活细胞脱氢酶催化的反应。任何待测 体系中存在还原剂,例如一些抗氧化剂会干扰检测,需设法去除。如果待测物质有 氧化性或还原性的话,可在加 CCK-8 之前更换新鲜培养基,去掉药物的影
响。当然药物影响比较小的情况可以不更换培养基,直接扣除培养基中加入药物后 的空白吸收即可;
7. 建议先做几个孔摸索接种细胞的数量和加入 CCK-8 试剂后的培养时间;
8. 建议采用多通道移液器,可以减少平行孔间的差异。加入 CCK 试剂时,建
议斜贴着培养板壁加,不要查到培养基液面下加样,溶液产生气泡,会干扰 OD 值 读数;
9. 当使用标准 96 孔板时,贴壁细胞的最小接种量至少为 1000 个/孔 (100µl
培养基) 。检测白细胞时的灵敏度相对较低,因此推荐接种量不低于 2500 个/孔,
(100µl 培养基),且培养时间长一些。如果要使用 24 孔板或 6 孔板实验,请先
计算每孔相应的接种量,并按照每孔培养基总体积的 10%加入 CCK-8 溶液;
10. 加入 CCK-8 溶液时,如果细胞培养时间较长,培养基颜色已变化或 PH 值
变化。建议换用新鲜的培养基;
11. 如果没有 450nm 的滤光片,可以使用吸光度在 430-490nm 之间的滤光
片,但是 450nm 滤光片的检测灵敏度最高;
12. 酚红和血清对本试剂盒的测定无明显影响。培养基中酚红的吸光度可以在
计算时,通过扣除空白孔中本底的吸光度而消去,因此不会对检测造成影响。
13. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。